| Literatura: |
1. B. Alberts, D. Bray, K. Hopkin, A. Johnson, J. Lewis, M. Raff, K. Roberts, P. Walter, Podstawy biologii komórki., PWN Warszawa, 2016.
2. E.U. Kurczyńska, D. Borowska-Wykręt, Mikroskopia świetlana w badaniach komórki roślinnej, PWN Warszawa, 2007.
Literatura uzupełniająca:
1. T. Drewa, Kultury komórkowe zwierząt i człowieka: przewodnik do ćwiczeń dla studentów kierunku biotechnologia, Uniwersytet Mikołaja Kopernika w Toruniu, Collegium Medicum im. Ludwika Rydygiera Bydgoszcz, 2007.
2. S. Stokłosowa, Hodowla komórek i tkanek, PWN Warszawa, 2004.
|
| Efekty uczenia się: |
1. Student opisuje podstawowe elementy struktury różnych komórek i wiąże je z procesami fizjologicznymi i pełnioną funkcją (WG2, WG3).
2. Student poznaje podstawowe techniki laboratoryjne i nabiera praktycznej umiejętności pracy z mikroskopem, wykonywania preparatów i
barwień, jak też analizy uzyskanych wyników (UW1).
3. Student wykazuje dbałość o bezpieczeństwo pracy w laboratorium i świadomość zagrożeń jak też poszanowania pracy własnej i innych (UO1).
|
| Metody i kryteria oceniania: |
Kryteria oceny pisemnych prac zaliczeniowych zgodne z Regulaminem studiów (Uchwała Senatu UwB nr. 2527 z dn. 26 czerwca 2019 r.)
Podstawą zaliczenia jest obecność i czynny udział w zajęciach. Student może opuścić dwa zajęcia. Zasady zaliczenia nieobecności należy ustalać z prowadzącym zajęcia.
Metody oceniania:
1. Sprawdzian pisemny w postaci testu zamkniętego.
3. Bieżąca ocena wyników pracy studentów podczas zajęć.
4. Sprawdzian praktyczny z rozpoznawania preparatów.
5. Sprawdzian praktyczny z umiejętności posługiwania się mikroskopem świetlnym.
|
| Zakres tematów: |
1. Zajęcia organizacyjne, zasady bezpieczeństwa pracy w laboratorium, podstawy obsługi mikroskopu świetlnego.
2. Zróżnicowanie budowy kształtów i rozmiarów komórek na przykładach komórek pro- i eukariotycznych.
3. Budowa i funkcje błon biologicznych na przykładzie erytrocytów krwi ssaków, wyznaczanie krzywej oporności osmotycznej erytrocytów.
4. Frakcjonowanie organelli komórkowych metodą wirowania jako jedna z metod poznawania struktury komórek, izolacja frakcji chloroplastów z materiału roślinnego.
5. Podstawowe metody kultur in vitro komórek zwierzęcych.
6. Struktura i funkcje mitochondriów.
7. Struktura jądra komórkowego i proces mitozy.
8. Metody badania żywotności komórek.
9. Zaliczenie praktyczne z rozpoznawania preparatów wykonywanych i obserwowanych wcześniej na zajęciach, zaliczenie umiejętności posługiwania się mikroskopem świetlnym.
10. Pisemny sprawdzian zaliczeniowy.
|
