Techniki molekularne w biologii 320-BS2-1TMB
Wykład (WYK) Rok akademicki 2022/23

Literatura podstawowa:

Węgleński P. (red.). 2006. Genetyka molekularna PWN. Warszawa

Bal. J. (red.) 2001. Biologia molekularna w medycynie. PWN Warszawa.

Słomski R. (red.). 2004. Przykłady analiz DNA. AP. Poznań.

Słomski R. (red.). 2008. Analiza DNA. Teoria i praktyka. UP. Poznań.

Buchowicz J. 2009. Biotechnologia molekularna. Modyfikacje genetyczne, postępy, problemy. Warszawa.

Aktualne publikację anglojęzyczne w temacie.

Literatura uzupełniająca:

Freeland J. Ekologia Molekularna. 2008. PWN. Warszawa.

1. Student wyjaśnia zasady poszczególnych metod biologii molekularnej. (KA7_WG6).

2. Student charakteryzuje wady i zalety poszczególnych metod biologii molekularnej oraz zna ich zastosowanie. (KA7_UW1)

3. Student rozróżnia metody analiz wielkości fragmentów DNA od analiz sekwencji DNA i potrafi stosować je w praktyce. (KA7_WG7).

4. Student jest świadomy możliwości badawczych i aplikacyjnych, jakie dają narzędzia biologii molekularnej. (KA7_UW2).

metody weryfikacji efektów KA7_WG6, WG7, UW1: - test pisemny z treści wykładów, pytania otwarte i zamknięte.

Egzamin pisemny podsumowujący przedmiot (test zamknięty i pytania otwarte) - KA7_WG6, WG7, UW1.

Kryteria oceny pisemnych prac zaliczeniowych zgodnie z kryteriami określonymi w §23 ust. 6 Regulaminu Studiów Uniwersytetu w Białymstoku przyjętego Uchwałą nr 2527 Senatu Uniwersytetu w Białymstoku z dnia 26 czerwca 2019 roku.

Treści wykładów:

1. Podstawowe techniki analiz białek i DNA: nieinwazyjne i inwazyjne pobieranie prób do badań molekularnych, metody izolacji DNA, oznaczania ilości i jakości wyizolowanego DNA.

2. Elektroforeza białek, metody immunologiczne (przeciwciała mono i poliklonalne), ELISA.

3. Reakcja PCR i jej odmiany RFLP-PCR, RT-PCR, Fast PCR, Hot-Start PCR, real-time PCR i inne). Optymalizacja reakcji PCR. Zasady projektowania starterów do reakcji PCR, ocena ich jakości.

4. Analiza SNP, AFLP, SSCP, FISH i mikromacierzy DNA.

5. Sekwencjonowanie DNA metodą dideoksy.

6. Pirosekwencjonowanie, sekwencjonowanie w nanoporach. Sekwenatory nowej generacji (Roche 454, Illumina, SMRT i inne), zasady ich funkcjonowania.

7. Analiza ekspresji genów.

Wykład, wykład problemowy, pokaz działania na stronach www, animacje i krótkie filmy w internecie nt. wybranych TMB.